Accelerated Solvent Extraction Techniques for In-Line Selective Removal of Interferences

Význam tématu

Pokročilá extrakce rozpouštědlem (ASE) s in-line čištěním umožňuje současné odstranění interferencí během extrakce a redukuje potřebu dalších kroků čištění.

Cíle a přehled studie / článku

Text shrnuje sedm postupů založených na ASE k selektivnímu odstranění koextrahovaných rušivých látek z různých matric, včetně lipidů, pesticidů a iontů.

Použitá metodika a instrumentace

• Thermo Scientific Dionex ASE 200 s tiskovými buňkami Prep DE
• OnGuard II iontové výměnné kartridže (Ag, Ba, H, RP)
• Adsorbenty: aktivované Al₂O₃, silika gel, acid-impregnovaná silika, Florisil, C18 bonded silica
• Doplňkové materiály: Na₂SO₄, Ottawa sand

Hlavní výsledky a diskuse

Selektivní in-cell sorpce umožňuje retenci nechtěných lipidů nebo látek jako jsou sulfonamidy, PCB a pesticidy. Například alumina účinně zamezuje extrakci lipidů v hexanu, acid-impregnovaná silika vyžaduje vyšší poměr sorbentu k lipidům a C18 živice efektivně zadržuje nepolární kontaminanty. Iontově výměnné pryskyřice umožňují izolaci perchlorátů z vegetace bez dalšího čištění.

Přínosy a praktické využití metody

• Integrace extrakce a čištění šetří čas a spotřebu rozpouštědel
• Redukce objemu organických rozpouštědel a vzniku odpadů
• Přímá připravenost extraktů k analýze GC/MS, LC/MS a dalším technikám
• Vhodné pro potravinářské, environmentální i farmaceutické aplikace

Budoucí trendy a možnosti využití

Další vývoj se zaměří na optimalizaci směsí sorbentů a rozšíření metodiky na nové matrice a analytické cíle. Integrace on-line s chromatografickými systémy a vyšší automatizace přispějí k produktivitě laboratoří.

Závěr

In-line čištění při ASE představuje efektivní a udržitelný přístup k přípravě vzorků, který minimalizuje pracovní postupy i náklady a zlepšuje reprodukovatelnost výsledků.

Reference

1. Nordling M. et al. Monitoring Dioxins in Food and Feedstuffs Using Accelerated Solvent Extraction with a Novel Integrated Carbon Fractionation Cell in Combination with CAFLUX Bioassay. Anal. Bioanal. Chem. 2005, 381, 1472–1475.
2. U.S. EPA Method 3660B. Sulfur Cleanup. U.S. EPA, Cincinnati, OH, 1996.
3. Thermo Fisher Scientific. Application Note 356. Determination of Perchlorate in Vegetation Samples Using Accelerated Solvent Extraction and Ion Chromatography. 2006.
4. Thermo Fisher Scientific. Application Note 353. Rapid Determination of Sulfonamide Residues in Animal Tissue and Infant Food. 2005.
5. Bjorklund E. et al. Comparison of Fat Retainers in Accelerated Solvent Extraction for the Selective Extraction of PCBs from Fat-Containing Samples. Anal. Chem. 2001, 73, 4050–4053.
6. Sporring S., Bjorklund E. Selective Pressurized Liquid Extraction of Polychlorinated Biphenyls from Fat-Containing Food Samples. J. Chromatogr. A. 2004, 1040, 155–161.
7. Ezzell J. et al. Selective Extraction of PCBs from Fish Tissue Using Accelerated Solvent Extraction. American Environmental Laboratory 1996, 12, 12–13.
8. Dionex. Application Note 322. Selective Extraction of PCBs from Fish Tissue Using ASE. 1996.
9. Dionex. Application Note 342. Determination of PCBs in Large-Volume Fish Tissue Samples Using ASE. 2000.
10. Gomez-Ariza J.L. et al. Determination of Polychlorinated Biphenyls in Biota Samples Using Simultaneous Pressurized Liquid Extraction and Purification. J. Chromatogr. A. 2002, 946, 209–219.
11. U.S. EPA Method 3620C. Florisil Cleanup. U.S. EPA, Cincinnati, OH, 2000.
12. Gomez-Ariza J.L. et al. Optimisation of a Pressurised Liquid Extraction Method for Haloanisoles in Cork Stoppers. Anal. Chim. Acta. 2005, 540, 17–24.
13. Draisci R. et al. Accelerated Solvent Extraction and LC–MS/MS Quantitation of Corticosteroid Residues in Bovine Liver. J. Chromatogr. B 2001, 753, 217–223.
14. Gentili A. et al. Accelerated Solvent Extraction of Sulfonamide Residues in Raw Meat and Infant Foods by LC–ESI–MS/MS. J. Agric. Food Chem. 2004, 52, 4614–4624.
15. Thermo Fisher Scientific. Application Note 358. Extraction and Clean Up of Acrylamide in Complex Matrices Using ASE Followed by LC–MS/MS. 2006.
16. Poerschmann J., Carlson R. New Fractionation Scheme for Lipid Classes Based on “In-Cell Fractionation” Using Sequential PLE. J. Chromatogr. A. 2006, 1127, 18–25.
17. Poerschmann J. et al. Sequential PLE to Determine Brain-Originating Fatty Acids in Meat Products as Markers in BSE Risk Assessment Studies. J. Chromatogr. A. 2006, 1127, 26–33.